Vista 기본 서비스 팩 2 시작 문제를 해결하는 방법
February 24, 2022컴퓨터에서 vista 기본 서비스 팩 2를 다운로드할 때 오류가 발생하는 경우 이러한 문제 해결 창의적 개념을 확인하는 것이 좋습니다.피>
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<리>1. Fortect 다운로드 및 설치Windows Vista 사용자는 Windows Update를 사용하여 최신 서비스 팩인 SP2(서비스 팩 2)로 컴퓨터를 업데이트할 수도 있습니다. “
작업: RNA를 착용한 게놈 DNA.문제: RNA가 저하됨/불완전한 무결성.문제: RNA가 존재하는 경우의 억제제.문제: 낮은 RNA 수율.
과거에는 RNA 분리가 가장 어려운 규칙 중 하나였습니다. 이 팁을 마스터한 거의 모든 사람은 샘플에서 작동하는 온전한 RNA를 성공적으로 검출하기 위한 자신만의 팁과 비밀 및 기술을 가지고 있습니다. RNA는 자연적으로 불안정하기 때문에 다소 예측할 수 없는 상태로 계속 살 수 있지만 몇 가지 일반적인 문제는 스스로 해결할 수 있습니다.
1. 문제: RNA의 게놈 DNA
RNA는 고분자량 성분의 중첩을 감지한 게놈 DNA에서 용리되거나 PCR로 증폭될 때 RT 필러 컨트롤에서 명확하게 나타납니다.
이유: 아무리 먼 거리에서 RNA를 찾는 데 어떤 방법을 사용하더라도 DNA 추적은 여전히 의미가 있습니다. 이것은 트리솔(페놀) 보충제 및 석영 원심 공기 필터에 적용됩니다. 이것은 균질화의 일부 수준에서 게놈 DNA의 전단 슬픔으로 인해 발생할 수 있습니까? 페놀 방법을 사용할 때 특정 페놀의 pH는 매우 중요하며(특히 산성이어야 함) 새로운 수상을 1차로 피펫팅하는 능력은 다소간의 DNA 오염을 부산물로 만듭니다.
해결 방법: 게놈 DNA는 잘 균질화되어야 하며 균질화 중에 샘플이 가열될 수 있도록 모든 DNA를 충분히 파괴하는 기술을 사용해야 하지만 사용자 정의 가능 구아니딘으로 인해 샘플을 구성 요소로 사용하면 사용 가능한 모든 염이 쉽게 침전됩니다. 따라서 특정 거실의 온도까지 균질화 시간을 /c 시간으로 남겨야 합니다.
게놈 DNA 몇 개를 제거하는 가장 좋은 방법은 기본적으로 RTS DNase™ 치아 미백 키트와 같은 DNase 치료를 사용하는 것입니다. type d DNA 오염 물질을 효과적으로 제거하는 안정적인 DNase입니다. 모든 DNA가 제거된 후 이 수지는 열이나 EDTA 없이 DNase 화학물질을 제거하는 데 사용됩니다. 이 키트의 펀치 인은 주로 늦은 gDNA가 풍부한 샘플(예: 비장 조직), 처리 전에 심하게 정제된 샘플, DNA 및 개발하는 동안 매우 작은 샘플이 필요한 샘플을 생성하는 데 권장됩니다. 컬럼 방법은 게놈 DNA 오염을 사용하여 낮은 수준의 샘플에 쉽게 권장될 수 있습니다.
2. 문제: RNA 분해/불량 무결성
코팅된 rRNA 소리는 의심할 여지 없이 겔에 나타납니다. 아마도 레인 18은 레인 28보다 약간 더 강렬할 것입니다. Agilent bioanalyzer에서 18초가 크게 증가한 것을 볼 수 있습니다.
원인: 처리 과정에서 특정 상태에서 성능 저하가 발생했습니다. 이것은 성공적으로 찾아내기 어려울 수 있습니다. 그는 수집 및/또는 검색을 저장할 때 순위를 얻을 수 있습니다. 또 다른 사후 격리가 발생했음을 나타낼 수도 있습니다.
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결정. 보관 중 우려 사항이 발생하면 수집 후 즉시 시도를 중지하십시오. 주스 질소를 사용하거나 -80°C에서 보관하십시오. 피부의 경우 동물은 RNALater를 사용하고 -20°C에 보관합니다.
RNA는 단일 트랩이고 일시적인 DNA는 대부분 이중 붙어 있습니다. 온전한 RNA를 분리하는 것은 종종 어렵습니다. 불행히도 RNA 분자를 분해하는 효소로 인한 그룹인 RNase는 손과 표면을 포함하여 전 세계적으로 풍부하여 RNase를 완전히 제거/파괴하는 것은 거의 불가능합니다.
추출 과정에서 문제가 발생하면 베타-메르캅토에탄올(BME)을 용해 스크린에 묻어보세요. 용해 장벽을 포함하여 1 ml당 14.3 M BME 10 μl를 사용합니다. BME는 RNase를 죽이고 샘플 추출 프로그램을 유지합니다.
샘플이 검색을 위해 의심할 여지 없이 냉동고에서 나왔고 첨가제 솔루션에 들어 있지 않은 경우, 해동을 고려하지 마십시오. BME가 존재할 대부분의 경우 즉시 균질화하십시오. 원단 잔여물이 남지 않도록 합니다. 핥아야 합니다.
RNase의 분해는 분리 후에도 쉽게 발생합니다. 정제를 양성으로 용리하거나 재현탁하는 데 사용되는 여과수에 RNase가 포함되어 있지 않은지 확인하십시오. 많은 키트에는 RNA 작업을 위한 Lake가 포함되어 있으며 DEPC로 처리하거나 유틸리티를 사용할 수 있습니다. 여기에서 DEPC 및 RNase 치료에 대한 오해에 대해 자세히 알아보십시오.
또한 RNase를 제거하는 10가지 방법에 대한 기사가 전반적으로 도움이 될 수도 있습니다.
3. 문제: RNA의 억제제
RNA는 실제로 260/230(1.0 미만)이 비정상적으로 낮고 심지어 260/280에 대해서도 역전사에 위치하지 않습니다.
낮은 RNA 수율의 가장 일반적인 원인은 종종 컬럼 과부하로 인해 컬럼 막힘 또는 효율적인 RNA 캡처가 발생할 수 있습니다. 용해에 의한 희석, 높은 기계적 결합 및 원심분리와 같은 점도를 줄이는 방법은 RNA 수율을 최대한 활용할 수 있습니다.
이유: RNA 준비에서 260/230의 적당한 이익은 샘플에 좋은 구아니딘 염 또는 전형적인 억제제(예: 부식산 또는 샘플이 우리 자신의 환경에 있는 경우 단순히 다당류). 구아니딘 염은 트리졸 및 실리카 제제와 함께 사용됩니다. 이 염은 RNase를 비활성화하지만 닫는 RNA에 존재하는지 여부에 관계없이 RT 소화 효소와 같은 아미노도 억제합니다. 260/280과 관련된 낮은 값은 단백질 오염을 나타냅니다.
소개. Windows Vista 및 Windows Server 2008의 서비스 팩 2(SP2)는 새로운 절차 유형과 새로운 하드웨어 표준을 지원합니다. 이 소프트웨어 패키지에는 SP1 이후에 제공되는 모든 최신 뉴스가 포함되어 있으며 소비자, 개발자 및 IT 전문가가 간편하게 사용할 수 있습니다.
결정. 낮은 260/230 판독값에서 최근 가장 좋은 방법은 RNA 샘플을 더 철저하게 세척하는 것입니다. 이제 trizol이 침전된 경우 세탁실에서 에탄올로 탈염하십시오. 실리카 제제의 경우 70-80% 에탄올에 적신 물티슈 몇 개를 해수주에 세척해야 합니다. 새 것이 아닌 설거지를 의심할 여지 없이 하려면 에탄올 침전으로 RNA 담수화를 시도하십시오.
휴믹산 및 다당류와 같은 다양한 억제 화합물의 경우 용리하기 전에 다른 루이스에서 다시 정제하고 철저히 세척해야 할 수 있습니다. 이러한 화합물 중 일부는 일반적인 팁으로 내부(또는 RNA-DNA)에서 조금 더 제거되지 않을 것입니다. 왜냐하면 핵산과 너무 다르기 때문에 실제로 도움이 되지 않기 때문입니다. 이 보호 케이스의 경우 주변 샘플에서 억제제를 폐기하는 것이 좋습니다.
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